酚-氯仿法是分子生物学领域核酸提取的经典方法,基于核酸与细胞杂质在有机相和水相的分配差异实现分离纯化,凭借提取效率高、核酸完整性好、成本低廉等优势,至今仍是基础科研与常规检测中核酸提取的核心手段,也是理解核酸分离纯化原理的重要载体,为PCR扩增、酶切、测序、克隆等后续分子生物学操作提供高质量核酸模板。本文从核心原理、试剂组成、操作流程、适配场景、优劣势、优化技巧及方法对比等方面进行系统综述,为该方法的规范应用与优化提供参考。
酚-氯仿法的核心逻辑为蛋白变性与相分离,通过有机试剂的理化特性实现核酸与蛋白质、脂质、多糖等杂质的高效分离,同时通过pH调控和醇沉作用实现核酸的纯化与富集,核心原理分为四部分:
1.蛋白质变性失活:酚为弱酸性有机试剂,可破坏蛋白质的二级和三级结构使其变性;氯仿可增强酚的蛋白变性效果,同时促进变性蛋白质凝聚沉淀,避免其与核酸结合形成复合物,保证核酸游离。
2.相分层与杂质分离:酚-氯仿按比例混合后与水相裂解液振荡混匀,会形成清晰的两相体系——下层有机相(酚-氯仿相)、上层水相。核酸为极性大分子,不溶于有机相,稳定存在于水相;变性蛋白质、脂质、多糖等非极性杂质则进入有机相,中间层吸附微量未沉淀杂质,实现核酸与杂质的初步分离。
3.pH值的关键调控:提取体系的pH值决定核酸的相分配位置,是核心调控点。pH>7.0时,核酸带负电,稳定存在于水相,适用于基因组DNA、质粒DNA提取;pH4.0-5.0时,RNA仍保留在水相,DNA与酚发生氢键结合进入有机相,可实现RNA与DNA的高效分离[2]。
4.醇沉富集核酸:酚-氯仿抽提后的水相核酸,在高盐环境下(醋酸钠/氯化钠),经异丙醇或无水乙醇处理后,核酸分子氢键被破坏、脱水凝聚形成沉淀,离心后即可获得核酸沉淀,经洗涤、干燥后溶解,得到高纯度核酸[3]。
酚-氯仿法的试剂配制需严格控制纯度,避免杂质污染或破坏核酸结构,核心试剂及作用如下,提取RNA时需额外添加无酶试剂和RNA酶抑制剂[4]:
试剂名称 | 体积配比/常用浓度 | 核心作用 |
Tris饱和酚 | pH7.4-8.0(DNA)/pH4.5(RNA) | 蛋白变性,稳定pH,避免强酸性导致核酸链断裂 |
酚-氯仿-异戊醇混合液 | 25:24:1 | 增强蛋白变性,抑制振荡泡沫产生,稳定两相界面,便于水相吸取 |
3mol/L醋酸钠缓冲液 | pH5.2 | 提供高离子强度,中和核酸负电荷,促进核酸醇沉,抑制核酸酶活性 |
无水乙醇/异丙醇 | - | 核酸沉淀剂,异丙醇效率高(0.6-0.8倍水相),无水乙醇应用广(2倍水相) |
75%乙醇 | - | 洗涤核酸沉淀,去除残留盐离子和有机试剂,不溶解核酸 |
TE缓冲液 | 10mmol/L Tris-HCl+1mmol/L EDTA(pH8.0) | 溶解核酸,EDTA螯合金属离子,抑制核酸酶活性,适合核酸长期保存 |
无酶水 | - | 溶解核酸,适用于提取后立即进行后续实验的场景 |
辅助试剂 | 蛋白酶K/RNase A/DEPC | 蛋白酶K降解蛋白质,RNase A去除DNA中RNA杂质,DEPC灭活RNA酶(RNA提取专用) |
表1
酚-氯仿法操作流程可根据样本类型微调,核心步骤一致,全程需低温操作(冰浴/4℃),避免核酸酶降解核酸,严禁剧烈振荡,防止核酸链断裂,通用流程共8步,耗时30-60min:
1.样本前处理与细胞裂解:将研磨后的组织、细胞沉淀、菌体等样本加入裂解缓冲液,充分混匀;根据需求加入蛋白酶K(55℃水浴1-2h)或SDS,彻底破坏细胞结构,释放胞内核酸[5]。
2.酚-氯仿抽提:向裂解液中加入等体积酚-氯仿-异戊醇混合液,轻轻上下颠倒10-15次混匀,室温12000r/min离心10min。
3.水相吸取:离心后体系分三层(上层水相/中层蛋白杂质/下层有机相),用无菌宽口枪头小心吸取上层水相至新离心管,保留少量水相不吸取,避免杂质污染。
4.二次抽提(可选):对纯度要求较高的核酸,重复酚-氯仿抽提步骤,进一步去除残留蛋白质杂质。
5.核酸沉淀:向水相中加入1/10体积3mol/L醋酸钠,混匀后加入0.6-0.8倍异丙醇或2倍无水乙醇,轻轻颠倒混匀,室温放置10-15min(低浓度核酸可-20℃放置30min-1h)。
6.离心收集沉淀:12000r/min室温离心10-15min,弃上清,离心管底部可见白色/透明核酸沉淀。
7.洗涤与干燥:加入1-2mL75%乙醇洗涤沉淀,10000r/min离心5min,弃上清,重复1-2次;将离心管倒扣在无菌滤纸上,室温干燥5-10min,避免过度干燥导致核酸难以溶解。
8.核酸溶解:根据沉淀量加入适量TE缓冲液或无酶水,轻轻吹打混匀,4℃放置30min或室温10min,充分溶解后即可用于后续实验或-20℃/-80℃保存。
酚-氯仿法适配性广,可处理多种样本类型,提取不同类型核酸,是样本复杂、需求多样时的优选方法,核心适配场景如下:
1.适配核酸类型:基因组DNA、质粒DNA、总RNA,通过调整酚的pH值、添加辅助试剂可实现针对性提取,如pH4.5+DEPC处理可提取纯RNA,温和裂解+RNaseA处理可纯化质粒DNA。
2.适配样本类型:动物组织/血液/细胞培养物、植物组织(叶片/根/茎)、微生物(细菌/真菌/酵母)、粪便样本、环境样本(土壤/水体)等;植物样本需提前加PVPP去除多酚,血液样本需加红细胞裂解液去除红细胞[6-10]。
3.适配实验需求:对核酸纯度和完整性要求较高的后续实验,如PCR/实时荧光定量PCR、核酸电泳、酶切反应、基因克隆、核酸测序、Southern/Northern杂交等,提取的核酸A260/A280比值可达DNA 1.8-2.0、RNA 1.9-2.1,符合高质量核酸标准。
1.提取效果佳:细胞裂解彻底,核酸回收率高,操作温和,不易导致核酸链断裂,提取的核酸片段完整(可达几十kb),适合长片段核酸提取。
2.核酸纯度高:多次酚-氯仿抽提可彻底去除蛋白质、脂质等杂质,无酶类和载体蛋白污染,满足高精度实验需求。
3.成本低廉:核心试剂(酚/氯仿/乙醇)均为常规分子生物学试剂,易采购、价格低,相较于商业化试剂盒,可大幅降低大规模样本提取成本。
4.灵活性强:可根据样本类型、核酸类型和实验需求,灵活调整试剂比例、pH值、抽提次数,无需严格遵循固定流程,操作门槛低。
1.试剂具有毒性腐蚀性:酚强腐蚀性,氯仿具有挥发性和毒性,长期接触危害人体健康,操作需在通风橱内进行,且需做好全套防护。
2.操作繁琐耗时:涉及多次抽提、离心、沉淀步骤,相较于商业化试剂盒,耗时更长,不适合应急实验和高通量样本提取。
3.部分样本前处理复杂:多酚、多糖含量高的植物样本和杂质多的环境样本,直接提取易出现核酸与杂质结合,需提前脱酚、脱糖处理。
4.RNA提取难度高:RNA酶广泛存在且耐高温、耐酸碱,若试剂/耗材未严格无酶处理,极易导致RNA降解,实验成功率低于DNA提取。
1.全程低温防护:核酸酶室温下活性高,全程冰浴/4℃操作,采用低温离心机,防止核酸降解;提取RNA时,所有耗材经DEPC处理并高压灭菌,试剂用0.1% DEPC水配制[11]。
2.避免剧烈操作:混匀酚-氯仿与裂解液时,轻轻上下颠倒,严禁剧烈振荡,防止基因组DNA断裂;吸取水相使用宽口枪头,避免枪头吸附核酸导致损失。
3.规范吸取水相:吸取时枪头避免接触中层和下层,保留少量水相,防止杂质污染;若水相被污染,需立即重新抽提。
4.废液规范处理:实验后的有机废液单独收集,交由专业机构处理,不可随意排放;酚溅到皮肤/黏膜后,立即用大量清水冲洗,再用稀氨水/酒精擦拭。
5.防止交叉污染:所有耗材无菌无酶,操作过程中佩戴一次性无粉手套,避免用手接触耗材内壁,不同样本分开操作。
1.提升核酸纯度:A260/A280比值偏低(含蛋白杂质),增加抽提次数或提高蛋白酶K浓度/水浴时间;DNA中含RNA杂质,加入RNase A(37℃水浴30min)降解RNA。
2.减少核酸损失:低浓度核酸提取时,-20℃延长沉淀时间至1h,或加入糖原作为载体促进沉淀;干燥沉淀时避免过度干燥,若沉淀难以溶解,可55℃水浴轻微加热[12]。
3.优化植物样本提取:研磨时加入PVPP吸附多酚,裂解液中加入高浓度NaCl,抑制多糖与核酸结合,减少多糖杂质[13]。
4.优化RNA提取:操作全程佩戴无粉手套,使用无酶耗材,提取后立即溶解并-80℃保存,避免反复冻融;可在裂解液中加入RNA酶抑制剂,提升RNA完整性。
5.简化操作流程:常规实验对纯度要求较低时,可减少抽提次数至1次;沉淀后用无水乙醇快速洗涤,缩短实验时间。
分子生物学领域常用核酸提取方法还有硅胶柱法、磁珠法、盐析法,不同方法原理、优劣势和适配场景差异显著,可根据实验需求、样本类型和实验室条件选择,核心对比如下表[14-15]:
提取方法 | 核心原理 | 核心优势 | 主要局限性 | 适配场景 |
酚-氯仿法 | 相分离与核酸醇沉 | 纯度高、回收率高、成本低、核酸完整 | 操作繁琐、试剂有毒、耗时 | 实验室常规实验、大规模样本提取、长片段核酸提取 |
硅胶柱法 | 硅胶柱对核酸特异性吸附 | 操作快速、无毒性、纯度较高 | 成本高、回收率偏低、适合短片段 | 应急实验、中小通量样本提取、常规PCR模板制备 |
磁珠法 | 磁珠对核酸特异性结合 | 自动化程度高、无离心、高通量 | 成本高、磁珠易损耗、对样本浓度要求高 | 高通量样本提取、自动化核酸检测、临床样本检测 |
盐析法 | 高盐下蛋白变性沉淀 | 操作简单、无毒性、成本极低 | 纯度低、杂质去除不彻底 | 核酸粗提、初步筛选实验、低成本快速实验 |
表2
随着分子生物学技术的发展,酚-氯仿法不断结合其他方法优势进行改良,弥补自身局限性,主要改良方向包括:
1.试剂配方改良:开发酚-氯仿-异硫氰酸胍混合试剂,结合异硫氰酸胍的强裂解和RNA酶抑制作用,实现RNA的快速高效提取,成为TRizol法的核心原理[16]。
2.与固相提取结合:将酚-氯仿抽提后的水相通过硅胶柱吸附洗脱,结合酚-氯仿法杂质去除彻底和硅胶柱法快速提取的优势,兼顾纯度与效率[17]。
3.自动化适配:将酚-氯仿法操作流程整合到自动化核酸提取仪中,通过机械臂完成抽提、离心、沉淀等步骤,实现高通量样本自动化提取,适合大型实验室和检测机构[18]。
4.低毒试剂替代:开发无酚、低毒的有机试剂替代传统酚-氯仿,在保证提取效果的前提下,降低操作风险,提升实验安全性[19]。
酚-氯仿法作为核酸提取的经典方法,历经数十年发展,仍是分子生物学基础科研的核心手段,其高纯度、高回收率、低成本的优势,使其在实验室常规实验、大规模样本提取和低成本实验中仍具有不可替代性,同时也是理解核酸分离纯化原理的重要载体,为其他核酸提取方法的开发奠定了基础。
尽管当前核酸提取技术朝着快速、高通量、无毒性、自动化的方向发展,商业化试剂盒和自动化提取设备逐渐成为主流,但酚-氯仿法并未被淘汰,而是通过试剂改良、流程优化和与自动化技术的结合,不断提升适用性。未来,随着低毒、高效替代试剂的开发和自动化操作体系的完善,酚-氯仿法将进一步降低操作风险、提升提取效率,继续在核酸提取领域发挥重要作用,为基础科研和临床检测提供更可靠、高效的核酸提取方案[20-21]。
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