做qPCR最崩溃的时刻是什么?引物设计没问题、操作步骤没出错,结果却总是扩增曲线杂乱、Ct值漂移、重复性时好时坏。当你排除了引物设计和模板质量问题后,预混液的配方和操作细节往往是决定成败的最后一公里。试剂基底细微的偏差,都会被荧光定量PCR无限放大。
今天一文讲透qPCR Mix的核心配方,看懂成分,实验不慌。
市面上的qPCR预混液通常是2×浓缩液,使用时只需加入模板和引物即可。核心成分包括:
核心成分 | 作用 | 关键说明 |
热启动DNA聚合酶 | 催化DNA链延伸 | |
反应缓冲液 | 提供最适pH和离子环境 | 含Tris、K⁺等,经优化确保扩增效率 |
Mg²⁺ | 聚合酶活性必需的辅因子 | 浓度经精确优化,影响酶活性和特异性 |
dNTPs | DNA合成的原料 | 高纯度,确保扩增准确 |
SYBR Green I 荧光染料 | 嵌合双链DNA产生荧光信号 | |
稳定剂 | 保护酶活性和荧光染料 | 提升试剂批次间稳定性 |
ROX参比染料(可选) | 校正孔间荧光信号差异 |
部分高端预混液还额外添加了UDG酶和dUTP,用于防止PCR产物的气溶胶交叉污染。
热启动技术的两种实现方式:抗体封闭型通过在低温下抗体与Taq酶结合抑制其活性,高温变性时抗体失活释放酶活性;化学修饰型通过化学基团在低温下封闭酶活性中心,高温加热后脱除修饰基团恢复活性。两者原理不同,但目标一致——降低非特异性扩增,提高灵敏度。
参照主流qPCR操作规范:[3]
组分 | 储存浓度 | 单孔体积 (μL) | 反应终浓度 | 关键实操备注(必看) |
2× qPCR Mix | 2× | 10 | 1× | 从-20℃取出后手指搓融,涡旋瞬离,禁止水浴加热 |
上游引物 | 10 μM | 0.4(可调至0.8) | 0.2 μM(可调至0.4) | 上下游引物体积必须相等;效率不佳时再同步加倍 |
下游引物 | 10 μM | 0.4(可调至0.8) | 0.2 μM(可调至0.4) | 同上 |
模板DNA/cDNA | 视类型而定 | 按右侧要求加入 | 视实验而定 | 质粒:1 μL(含10 pg~1 ng) |
无菌超纯水 | — | 计算公式:9.2 - 模板体积(μL) | — | 例:模板2 μL → 加水 9.2-2 = 7.2 μL |
总体积 | — | 20 | — | 建议每孔预混液总量多配10%~15%,补偿移液损耗 |
关键提醒(实验党必看):
1. 冰上操作:所有试剂在冰上解冻、配制,防止酶提前激活。
多配10%:考虑移液损耗,每个基因的反应体系至少多配10%。
充分混匀+离心:每步预混液配制完成后必须涡旋混匀并短暂离心,确保成分均一。
2. 避光操作:SYBR Green荧光染料在自然光下不稳定,长期光照会导致荧光背景显著升高和灵敏度下降,建议全程避光操作,且室温放置时间不宜超过30分钟。
3. 设置NTC:无模板对照验证体系是否被污染
4. 扩增结束后务必运行熔解曲线程序(65℃升至95℃,采集荧光),确认产物为单一特异性熔解峰。若出现双峰或多峰,说明存在非特异性扩增或引物二聚体,数据不可用。
配方虽然清晰,但每次实验都要精确移取多种组分——引物、酶、dNTP、缓冲液——不仅繁琐,还容易引入误差。更头疼的是,自己配制的Mix批次间稳定性难以保证,稍微有点偏差,数据就“飘”了。
杭州富沃克生物推出的qPCR高灵敏预混液,采用化学修饰热启动Taq酶,常温下完全抑制酶活性,杜绝室温配制时的非特异性结合。体系内含高纯度dNTP、均衡镁离子浓度与专用扩增稳定剂,扩增效率稳定维持在90%~110%。关键是——开盖即用,只需加入引物和模板。
产品名称 | 规格 | 产品货号 |
qPCR mix | 1ml | FQP606-01 |
厂家联系微信号:19850855600

官网链接:好物分享丨做qPCR总翻车?一瓶高稳定预混液,稳住你的每一次实验数据-杭州富沃克生物科技有限公司
[1] 实时荧光定量PCR预混液(2×SYBR Green Mix)产品说明,欧凯生物
[2] 2×HSYBR qPCR Mix产品说明,北京庄盟国际生物
[3] Seebio®热启动Taq酶qPCR预混液(2X) (UDG plus)产品页面,西宝生物
5.
电话
微信扫一扫