TB/Amp/X-Gal/IPTG平板是基于高密度TB培养基(Terrific Broth)的蓝白斑筛选琼脂平板,用于氨苄抗性质粒转化子的高密度蓝白斑筛选和重组子鉴定。与LB蓝白斑平板相比,TB平板含有更高浓度的胰蛋白胨(1.2% vs 1%)和酵母提取物(2.4% vs 0.5%),甘油作为碳源,磷酸盐缓冲体系维持pH稳定,支持转化后菌株达到更高的菌体密度,可显著提高转化子数量,特别适合转化效率较低、需要筛选大量克隆、以及高密度培养条件下的蓝白斑筛选实验。本产品兼具蓝白斑筛选功能和高密度培养优势,是cDNA文库构建、噬菌体文库筛选、大规模克隆筛选等实验的理想选择。
1.2%(W/V)Tryptone(胰蛋白胨) – 提供氮源、氨基酸和肽类
2.4%(W/V)Yeast Extract(酵母提取物) – 提供维生素、生长因子和核苷酸
0.4%(V/V)Glycerol(甘油) – 碳源和能量来源
17mM KH₂PO₄(磷酸二氢钾) – 缓冲体系酸性组分
72mM K₂HPO₄(磷酸氢二钾) – 缓冲体系碱性组分
0.1mg/ml Ampicillin(氨苄青霉素) – 抗性筛选压力
0.024mg/ml IPTG(异丙基-β-D-硫代半乳糖苷) – lac启动子诱导剂
0.04mg/ml X-Gal(5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-半乳糖苷) – β-半乳糖苷酶显色底物
1.5%(W/V)Agar(琼脂) – 培养基凝固剂
第一步:配制磷酸盐缓冲液(100ml)
称取 2.31g KH₂PO₄ 和 12.54g K₂HPO₄,溶于约90ml去离子水中。
充分搅拌至完全溶解后,加去离子水定容至 100ml。
高温高压灭菌(121℃,20min),备用。
第二步:配制基础培养基
称取以下各组分,置于1L烧杯中:
12g Tryptone
24g Yeast Extract
4ml Glycerol(甘油粘稠,沿烧杯壁缓慢滴加)
加入约 800ml 去离子水,磁力搅拌至完全溶解。
加去离子水定容至 1L,充分混匀。
加入 15g Agar,混匀。
高温高压灭菌(121℃,20min)。
灭菌后冷却至 60℃(水浴或室温自然冷却)。
第三步:添加磷酸盐缓冲液和筛选试剂
在超净台内无菌操作,依次加入以下组分并充分混匀:
100ml 灭菌磷酸盐缓冲液
1ml Ampicillin(100mg/ml)
1ml IPTG(24mg/ml)
2ml X-Gal(20mg/ml)
加药后快速摇匀,避免局部浓度过高。
第四步:铺制平板
培养皿提前紫外线消毒30分钟以上。
将培养基倒入无菌90mm培养皿中,30~35ml/皿。
室温静置至完全凝固(约30分钟),除尽气泡。
平板凝固后倒置存放。
4℃避光密封保存。
| 组分 | 浓度 | 功能 |
|---|---|---|
| Tryptone | 1.2%(12g/L) | 提供氮源和氨基酸,支持高密度菌体生长 |
| Yeast Extract | 2.4%(24g/L) | 提供B族维生素、生长因子和核苷酸 |
| Glycerol | 0.4%(4ml/L) | 碳源和能量来源,支持高密度生长 |
| KH₂PO₄ | 17mM | 磷酸盐缓冲对的酸性组分 |
| K₂HPO₄ | 72mM | 磷酸盐缓冲对的碱性组分,维持pH稳定 |
| Ampicillin | 0.1mg/ml | 氨苄抗性筛选,抑制非转化菌生长 |
| IPTG | 0.024mg/ml | lac启动子诱导剂,诱导β-半乳糖苷酶表达 |
| X-Gal | 0.04mg/ml | β-半乳糖苷酶显色底物,水解后产生蓝色沉淀 |
| Agar | 1.5%(15g/L) | 培养基凝固剂 |
涂布转化产物:将转化后的菌液涂布于平板上,37℃倒置培养12~16小时。
结果判读:
蓝色菌落 – 空载体或非重组质粒(无外源片段插入,lacZα完整)
白色菌落 – 重组阳性克隆(外源片段插入破坏lacZα)
后续分析:挑取白色菌落接种于TB/Amp液体培养基中进行质粒扩增或蛋白表达,TB培养基的高营养特性可提供更多菌体和质粒产量。
高密度培养优势:TB平板支持转化后菌落生长更健壮,蓝色显色更清晰,尤其适合需要筛选大量克隆的文库构建实验。
| 对比项 | LB/Amp/X-Gal/IPTG平板 | TB/Amp/X-Gal/IPTG平板 |
|---|---|---|
| Tryptone | 1%(10g/L) | 1.2%(12g/L) |
| Yeast Extract | 0.5%(5g/L) | 2.4%(24g/L) |
| 碳源 | 无 | 0.4%甘油 |
| 缓冲体系 | 无 | 磷酸盐(17mM KH₂PO₄ + 72mM K₂HPO₄) |
| 菌落大小 | 标准 | 更大、更健壮 |
| 菌落数量 | 标准 | 更多 |
| 显色清晰度 | 良好 | 更清晰(营养充分,β-半乳糖苷酶表达更充分) |
| 适用场景 | 常规蓝白斑筛选 | 文库筛选、大规模克隆筛选、转化效率较低的实验 |
磷酸盐缓冲液单独灭菌(最重要):磷酸盐缓冲液必须单独配制灭菌,待基础培养基冷却至60℃后加入。磷酸盐与培养基其他组分不可混合灭菌,防止高温下发生反应。
X-Gal全程避光(最重要):X-Gal为光敏试剂,添加剂需在-20℃储存,X-Gal称量、溶解、分装、添加及平板保存全程须避光操作。
冷却至60℃再加药(重要):Ampicillin、IPTG和X-Gal均不耐高温,必须待培养基冷却至60℃后再无菌添加,使用无菌移液管,防交叉污染。仅在此温度下添加,避免活性丧失。
pH调节注意:若需调节pH,5N NaOH具强腐蚀性,需戴手套、护目镜,逐滴慢加并搅拌,pH计校准后再测,微调至所需值。
倒置保存:平板凝固后必须倒置存放,严防冷凝水污染。
4℃避光密封:平板应4℃避光密封保存,尽快使用(建议1~2周内),防污染及X-Gal失效。
| 问题现象 | 可能原因 | 解决方法 |
|---|---|---|
| 所有菌落均为蓝色,无白斑 | 外源片段未插入或连接效率低 | 优化连接反应,使用去磷酸化载体 |
| 所有菌落均为白色,无蓝斑 | X-Gal/IPTG失效或未加入 | 重新配制X-Gal和IPTG,确认添加量 |
| 蓝色菌落颜色很浅 | X-Gal浓度不足或培养时间过短 | 延长培养至16小时,确保X-Gal浓度 |
| 平板凝固不均匀 | 灭菌后未充分摇匀 | 灭菌后立即充分摇匀琼脂 |
| 非转化菌大量生长 | Ampicillin失效或加入时温度过高 | 更换新鲜Ampicillin,冷却至60℃再加药 |
| 菌落过多难以挑取 | 转化效率高或涂布浓度过大 | 稀释转化产物后重新涂布 |
TB/Amp培养基 – 不含X-Gal/IPTG的TB抗性液体培养基
LB/Amp/X-Gal/IPTG平板 – 常规LB蓝白斑筛选平板
Ampicillin(100mg/ml) – 氨苄青霉素母液
IPTG(24mg/ml) – lac启动子诱导剂
X-Gal(20mg/ml) – 蓝白斑筛选显色底物
TB培养基(Terrific Broth) – 高密度液体培养基
DH5α/JM109/XL1-Blue感受态细胞 – 蓝白斑筛选用宿主菌
pUC19/pBluescript载体 – 含lacZα基因的标准克隆载体
SOC培养基 – 转化后复苏用培养基
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