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TB/Amp/X-Gal/IPTG平板 – 高密度蓝白斑筛选琼脂平板(1L 配制)

发布时间:2026-07-15      点击次数:0


TB/Amp/X-Gal/IPTG平板 – 高密度蓝白斑筛选琼脂平板(1L 配制)

产品用途

TB/Amp/X-Gal/IPTG平板是基于高密度TB培养基(Terrific Broth)的蓝白斑筛选琼脂平板,用于氨苄抗性质粒转化子的高密度蓝白斑筛选和重组子鉴定。与LB蓝白斑平板相比,TB平板含有更高浓度的胰蛋白胨(1.2% vs 1%)和酵母提取物(2.4% vs 0.5%),甘油作为碳源,磷酸盐缓冲体系维持pH稳定,支持转化后菌株达到更高的菌体密度,可显著提高转化子数量,特别适合转化效率较低、需要筛选大量克隆、以及高密度培养条件下的蓝白斑筛选实验。本产品兼具蓝白斑筛选功能和高密度培养优势,是cDNA文库构建、噬菌体文库筛选、大规模克隆筛选等实验的理想选择。

核心组分及终浓度

  • 1.2%(W/V)Tryptone(胰蛋白胨) – 提供氮源、氨基酸和肽类

  • 2.4%(W/V)Yeast Extract(酵母提取物) – 提供维生素、生长因子和核苷酸

  • 0.4%(V/V)Glycerol(甘油) – 碳源和能量来源

  • 17mM KH₂PO₄(磷酸二氢钾) – 缓冲体系酸性组分

  • 72mM K₂HPO₄(磷酸氢二钾) – 缓冲体系碱性组分

  • 0.1mg/ml Ampicillin(氨苄青霉素) – 抗性筛选压力

  • 0.024mg/ml IPTG(异丙基-β-D-硫代半乳糖苷) – lac启动子诱导剂

  • 0.04mg/ml X-Gal(5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-半乳糖苷) – β-半乳糖苷酶显色底物

  • 1.5%(W/V)Agar(琼脂) – 培养基凝固剂

配制方法(1L 体系)

第一步:配制磷酸盐缓冲液(100ml)

  1. 称取 2.31g KH₂PO₄12.54g K₂HPO₄,溶于约90ml去离子水中。

  2. 充分搅拌至完全溶解后,加去离子水定容至 100ml

  3. 高温高压灭菌(121℃,20min),备用。

第二步:配制基础培养基

  1. 称取以下各组分,置于1L烧杯中:

    • 12g Tryptone

    • 24g Yeast Extract

    • 4ml Glycerol(甘油粘稠,沿烧杯壁缓慢滴加)

  2. 加入约 800ml 去离子水,磁力搅拌至完全溶解。

  3. 加去离子水定容至 1L,充分混匀。

  4. 加入 15g Agar,混匀。

  5. 高温高压灭菌(121℃,20min)。

  6. 灭菌后冷却至 60℃(水浴或室温自然冷却)。

第三步:添加磷酸盐缓冲液和筛选试剂

  1. 在超净台内无菌操作,依次加入以下组分并充分混匀:

    • 100ml 灭菌磷酸盐缓冲液

    • 1ml Ampicillin(100mg/ml)

    • 1ml IPTG(24mg/ml)

    • 2ml X-Gal(20mg/ml)

  2. 加药后快速摇匀,避免局部浓度过高。

第四步:铺制平板

  1. 培养皿提前紫外线消毒30分钟以上

  2. 将培养基倒入无菌90mm培养皿中,30~35ml/皿

  3. 室温静置至完全凝固(约30分钟),除尽气泡

  4. 平板凝固后倒置存放。

  5. 4℃避光密封保存

各组分功能详解

组分浓度功能
Tryptone1.2%(12g/L)提供氮源和氨基酸,支持高密度菌体生长
Yeast Extract2.4%(24g/L)提供B族维生素、生长因子和核苷酸
Glycerol0.4%(4ml/L)碳源和能量来源,支持高密度生长
KH₂PO₄17mM磷酸盐缓冲对的酸性组分
K₂HPO₄72mM磷酸盐缓冲对的碱性组分,维持pH稳定
Ampicillin0.1mg/ml氨苄抗性筛选,抑制非转化菌生长
IPTG0.024mg/mllac启动子诱导剂,诱导β-半乳糖苷酶表达
X-Gal0.04mg/mlβ-半乳糖苷酶显色底物,水解后产生蓝色沉淀
Agar1.5%(15g/L)培养基凝固剂

使用方法

  • 涂布转化产物:将转化后的菌液涂布于平板上,37℃倒置培养12~16小时

  • 结果判读

    • 蓝色菌落 – 空载体或非重组质粒(无外源片段插入,lacZα完整)

    • 白色菌落 – 重组阳性克隆(外源片段插入破坏lacZα)

  • 后续分析:挑取白色菌落接种于TB/Amp液体培养基中进行质粒扩增或蛋白表达,TB培养基的高营养特性可提供更多菌体和质粒产量。

  • 高密度培养优势:TB平板支持转化后菌落生长更健壮,蓝色显色更清晰,尤其适合需要筛选大量克隆的文库构建实验。

LB蓝白斑平板与TB蓝白斑平板对比

对比项LB/Amp/X-Gal/IPTG平板TB/Amp/X-Gal/IPTG平板
Tryptone1%(10g/L)1.2%(12g/L)
Yeast Extract0.5%(5g/L)2.4%(24g/L)
碳源0.4%甘油
缓冲体系磷酸盐(17mM KH₂PO₄ + 72mM K₂HPO₄)
菌落大小标准更大、更健壮
菌落数量标准更多
显色清晰度良好更清晰(营养充分,β-半乳糖苷酶表达更充分)
适用场景常规蓝白斑筛选文库筛选、大规模克隆筛选、转化效率较低的实验

关键操作要点

  • 磷酸盐缓冲液单独灭菌(最重要):磷酸盐缓冲液必须单独配制灭菌,待基础培养基冷却至60℃后加入。磷酸盐与培养基其他组分不可混合灭菌,防止高温下发生反应。

  • X-Gal全程避光(最重要):X-Gal为光敏试剂,添加剂需在-20℃储存,X-Gal称量、溶解、分装、添加及平板保存全程须避光操作

  • 冷却至60℃再加药(重要):Ampicillin、IPTG和X-Gal均不耐高温,必须待培养基冷却至60℃后再无菌添加,使用无菌移液管,防交叉污染。仅在此温度下添加,避免活性丧失。

  • pH调节注意:若需调节pH,5N NaOH具强腐蚀性,需戴手套、护目镜逐滴慢加并搅拌,pH计校准后再测,微调至所需值。

  • 倒置保存:平板凝固后必须倒置存放,严防冷凝水污染。

  • 4℃避光密封:平板应4℃避光密封保存,尽快使用(建议1~2周内),防污染及X-Gal失效。

常见问题排查

问题现象可能原因解决方法
所有菌落均为蓝色,无白斑外源片段未插入或连接效率低优化连接反应,使用去磷酸化载体
所有菌落均为白色,无蓝斑X-Gal/IPTG失效或未加入重新配制X-Gal和IPTG,确认添加量
蓝色菌落颜色很浅X-Gal浓度不足或培养时间过短延长培养至16小时,确保X-Gal浓度
平板凝固不均匀灭菌后未充分摇匀灭菌后立即充分摇匀琼脂
非转化菌大量生长Ampicillin失效或加入时温度过高更换新鲜Ampicillin,冷却至60℃再加药
菌落过多难以挑取转化效率高或涂布浓度过大稀释转化产物后重新涂布

相关推荐

  • TB/Amp培养基 – 不含X-Gal/IPTG的TB抗性液体培养基

  • LB/Amp/X-Gal/IPTG平板 – 常规LB蓝白斑筛选平板

  • Ampicillin(100mg/ml) – 氨苄青霉素母液

  • IPTG(24mg/ml) – lac启动子诱导剂

  • X-Gal(20mg/ml) – 蓝白斑筛选显色底物

  • TB培养基(Terrific Broth) – 高密度液体培养基

  • DH5α/JM109/XL1-Blue感受态细胞 – 蓝白斑筛选用宿主菌

  • pUC19/pBluescript载体 – 含lacZα基因的标准克隆载体

  • SOC培养基 – 转化后复苏用培养基


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