科研好物｜10× TBE缓冲液

做核酸电泳的朋友都知道，跑小片段DNA或者做聚丙烯酰胺凝胶电泳时，TBE是绕不开的“老搭档”。今天整理一份10× TBE的简明指南，配方、配制要点、适用场景一次说清。

一、10× TBE是什么？

TBE全称是Tris-硼酸-EDTA缓冲液（Tris-borate-EDTA）。先配成10倍的浓缩液，用的时候稀释10倍就行——省空间、防污染。

TBE的核心优势是缓冲能力强，适合较长时间的电泳，对小片段DNA（尤其是小于1 kb的核酸）分离效果更好，分辨率高。不过，TBE中的硼酸会抑制DNA回收效率和后续酶反应，所以做切胶回收实验时，建议改用TAE。

二、标准配方长什么样？

我综合了百度百科、protocols.io（剑桥大学） 、Kerr Lab以及Sigma-Aldrich等多份来源，整理出以下“多方交叉验证”的10× TBE配方表：

注意：如果用固体Na₂EDTA·2H₂O代替EDTA母液，需称取7.44 g。建议直接使用预配好的0.5 M EDTA母液（pH 8.0），溶解更省心。

三、配制步骤与关键提醒

配制步骤：[1]

1. 称取108 g Tris碱和55 g硼酸于1 L烧杯中。

2. 加入约600 mL去离子水，磁力搅拌至完全溶解（硼酸溶解较慢，建议搅拌30–60分钟；如需加速溶解，可于室温下加热搅拌至不超过50°C）。待溶液澄清后再进行下一步。

3. 加入40 mL 0.5 M EDTA母液（pH 8.0） ，继续搅拌混匀。

4. 用去离子水定容至1 L，盖好瓶盖充分颠倒混匀10–15次，室温保存即可。建议分装成小体积（如100 mL/瓶）保存，避免反复开盖引入污染。

 关键提醒：

1. 10× TBE不需要调pH。[2]配好后1×工作液的pH自然在8.2–8.4之间。

2. 稀释成1×工作液：取100 mL 10× TBE，加去离子水定容至1 L。

3. 做琼脂糖凝胶电泳时，也常用0.5× TBE（50 mL 10× TBE + 950 mL水）。

4. 10× TBE不稳定，容易产生沉淀。建议现配现用，或分装后室温避光保存，不宜超过6个月。若长期存放后出现白色沉淀，属硼酸析出的正常现象，使用前37°C水浴加热并摇匀即可完全溶解，不影响使用效果。

四、省时省力，拿来即用

称量、溶解、担心沉淀……这些琐事交给专业的来。杭州富沃克生物科技有限公司提供即用型10× TBE缓冲液，严格参照标准配方质控，开瓶稀释即可上机，帮你把宝贵时间留给真正的实验。

 产品信息：

产品有试用装免费包邮（部分产品），详询微信/同手机：19850855600

官网链接：10X TBE-杭州富沃克生物科技有限公司

参考文献

[1] Kerr Lab. TBE Electrophoresis Buffer. University of Texas at Austin, 2012

[2] mowohnadine, Molloy J. Preparing 10x TBE Electrophoresis buffer. protocols.io, 2022. doi:10.17504/protocols.io.j8nlkkok5l5r/v1